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Farbe (105)
  1. blau
  2. blau|violett
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  9. transparent (kristallklar)
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  14. transparent (milchig)|orange
  15. transparent (milchig)|pink
  16. variabel
  17. weiß
Material (87)
  1. -
  2. Acrylat|Cellulose-Mischester
  3. Aluminium
  4. Aluminium|Acrylat
  5. Edelstahl
  6. Kautschuk, natur
  7. Polyester (PEs)
  8. Polyester (PEs)|Acrylat
  9. Polypropylen (PP)
  10. Polystyrol (PS)
steril (64)
  1. Ja
  2. Nein
autoklavierbar (63)
  1. Ja
  2. Nein
DNA-frei (48)
  1. Ja
  2. Nein
RNase-frei (48)
  1. Ja
  2. Nein
DNase-frei (48)
  1. Ja
  2. Nein
alphanumerisch codiert (47)
  1. Ja
  2. Nein
mit Verschluss/Deckel (39)
  1. Ja
  2. Nein
Volumen (37)
  1. 0,1 ml
  2. 0,2 ml
  3. 0,275 ml
  4. 0,3 ml
  5. 0,5 ml
  6. 1,1 ml
  7. 1,2 ml
  8. 2 ml
  9. 2,2 ml
pyrogenfrei (35)
  1. Ja
  2. Nein
Typ Verschluss/ Deckel (24)
  1. Klappverschluss/-deckel
  2. Push-on/Steckverschluss
  3. Push-on/Steckverschluss|Einzelverschluss
  4. Push-on/Steckverschluss|Verschluss-Strip
einzeln verpackt (24)
  1. Ja
  2. Nein
Verschluss-/ Deckeleigenschaften (22)
  1. flach
  2. flach|geschlossen (anhängend)
  3. flach|separat
  4. geschlossen
  5. gewölbt
  6. gewölbt|geschlossen (anhängend)
  7. gewölbt|separat
Anzahl Kavitäten (22)
  1. 24
  2. 384
  3. 48
  4. 96
Typ Platte (20)
  1. Deep Well-Platten
  2. Mikrotest-Platte
  3. PCR-Platten
mit Barcode erhältlich (20)
  1. Ja
  2. Nein
Form Kavitäten (20)
  1. rund
cut corner (18)
  1. Ja
  2. Nein
Typ Rahmen MTP (18)
  1. halber Rahmen
  2. ohne Rahmen
  3. voller Rahmen
Typ Kavitätenrand (17)
  1. erhöht
  2. kein Rand (flach)
  3. Standard
Profil (17)
  1. Low Profile
  2. Standard
Flüssigkeitsverhalten (17)
  1. hydrophob
zentrifugierbar (17)
  1. Ja
  2. Nein
Analytische Methode (16)
  1. Realtime-PCR
  2. Standard-PCR
  3. Standard-PCR|Realtime-PCR
oberflächenoptimiert (14)
  1. Nein
Typ Röhrchen/ Mikrogefäß (14)
  1. PCR-Reaktionsgefäße
  2. Reaktionsgefäße
Anzahl Tubes (13)
  1. 8
  2. 960
zentrifugierbar bis (12)
  1. 2000 g
  2. 4000 g
DM Kavitäten (11)
  1. 4 mm
  2. 5,5 mm
RNA-frei (10)
  1. Ja
mit dünnwandigen Kavitäten (9)
  1. Ja
Rahmen mit erhöhtem Rand (9)
  1. Ja
  2. Nein
Farbe Verschluss/ Deckel (7)
  1. transparent (kristallklar)
  2. transparent (milchig)
Material Verschluss/ Deckel (7)
  1. Polyethylen (PE)
  2. Polypropylen (PP)
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PCR

PCR Anwendungen neoLab

PCR (polymerase chain reaction) – Die Standard-Methode zur Amplifikation von DNA-Sequenzen. Vom Thermocycler, PCR-Platten und -Tubes, Verschlussfolien und -Strips bis hin zu den benötigten Chemikalien steht neoLab Ihnen helfend zur Seite. Von den notwendigen Geräten, wie dem Thermocycler und Zentrifugen, den PCR-Platten und -Tubes, Verschlussfolien und -Strips kompatiblen zu Ihrem Cycler, bis hin zu den benötigten Chemikalien. Diese gliedern sich in die Kategorien Nukleotide, Wasser und Enzyme, Puffer und fertigen PCR-Kits.

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neoLab PCR Zubehör
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Ansicht als:
96well PCR-Platte, ohne Rand, klar | 7-5202 Verkauf
Ansicht als:

Mit der Entdeckung der DNA im Jahr 1953 durch Watson und Crick wurde ein neue Ära in den Naturwissenschaften eingeleitet.
Neue Methoden wurden erschlossen, in den Laboren etabliert und bis heute optimiert. Eine dieser Methoden ist die Polymerase-Ketten-Reaktion (PCR). Die PCR stellt die Standardmethode zur Amplifikation von DNA innerhalb weniger Stunden dar. 1983 stellte Mullis diese Innovation erstmals vor und erhielt hierfür 1993 den Nobelpreis der Chemie.

Die Methode der PCR ist somit eine in vitro Vervielfältigung einer Nukleinsäure nach dem in vivo Vorbild der Natur. Die PCR ist heutzutage die wichtigste moderne Methode in der Molekularbiologie. Beispiele für die Anwendung ist die Erkennung von Erbkrankheiten und Virusinfektionen, das Erstellen eines genetischen Fingerprints, das Klonieren von Genen und findet ebenfalls Anwendung in der Lebensmittelindustrie.


neoLab PCR Geräte

Für die PCR sind unterschiedliche Geräte, biologischen Substanzen und den dazugehörigen Verbrauchsmaterialien nötig: Grundgeräte, wie Thermocycler, RealTime-PCR-Instrumente oder Zentrifugen, ermöglichen die hohe Qualität und sichern die Reproduzierbarkeit Ihrer PCR. Hierbei findet eine zunehmende Automatisierung der Geräte im Labor statt.



neoLab PCR Platten

Verbrauchsmaterialen, wie PCR-Platten verlangen durch Ihre große Varianz eine Orientierung PCR-Cycler zu orientieren. Von weißen Platten für die qPCR, den gängigen 96-well- und den Variationen von 24-, 48- und 384-well-Platten finden Sie bei neoLab alle Typen von PCR-Platten: Vom Vollrand, Halbrand bzw. ohne Rand, über das Standard- & Niederprofil, einem cut corner und den unterschiedlichen Formen des Bodens.


neoLab PCR Tubes Strips

Neben den Well-Platten sind die einzelnen Tubes, 8er- oder 12er-Strips in 0,2 oder 0,5 ml sind eine gängige Alternative im Labor. Ob separat oder mit anhängenden Deckel, als Streifen oder Einzeldeckel, in flacher oder gewölbter Form: Der Deckel sollte ebenfalls passend zum PCR-Cycler gewählt werden, um einen Flüssigkeitsverlust durch Verdunstung minimal zu halten.

Neben den Geräten und den Verbrauchsmaterialien spielen die Biochemikalien für den Mastermix die bedeutendste Rolle bei der PCR: Puffer, Salze, Primer, dNTP´s und die Polymerase, neben der gewünschten Nukleinsäure.


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dNTP´s (Desoxyribonukleosidtriphosphat) sind eine energiereiche Verbindung und ein Baustein der DNA-Replikation. Diese Bausteine enthalten drei Grundelemente:
Triphosphat, Desoxyribose und einer Nukleobase.


Die Base ist 1´ durch eine glykosidische Bindung an die 2´-Desoxyribose gebunden. Dieses Element wird als Nukleosid bezeichnet. Durch eine weitere glykosidische Bindung am 5´ der Ribose mit einem Phosphat entsteht ein Nukleotid. Abhängig von der Anzahl an Phosphaten handelt es sich um ein Nukleosidmono-, Nukleosiddi- oder Nukleosidtriphosphat. Die erwähnten Nukleobasen unterscheiden sich in Purine und Pyrimidine :


Die Purine enthalten die Basen Adenin (A), Guanin (G) und die Pyrimidine die drei Basen Thymin (T), Cytosin (C) und Uracil (U). Thymin kommt ausschließlich in der DNA und Uracil in RNA vor. Die verwendeten dNTP`s beinhalten somit dATP, dGTP, dTTP und dCTP.


Grundlegende Voraussetzung des Mastermix`s ist die Reinheit des verwendeten Wassers. DNA-freies Wasser ist eine notwendige Grundlage, um eine Amplifikation von Fremd-DNA auszuschließen. Das Enzyme DNA-Polymerase ist im Vergleich zur klassischen Polymerase thermostabil – auch über 40 PCR-Zyklen – und denaturiert nicht: Pfu- und Taq-Polymerase sind die am häufigsten verwendeten DNA-Polymerasen.


Ein handelsüblicher PCR-Puffer hat das Ziel die Funktionalität der DNA-Polymerase sich zu stellen und besteht aus einem Haupt- und einem Nebenpuffer. Der Hauptpuffer besteht in der Regel aus Tris und 15 mM MgCl2. Durch optionalen Einsatz des Zusatzpuffers können dessen Eigenschaften beeinflusst und optimiert werden. Ein Kombinationspuffer ist ein bereits kombinierter, spezifischer Puffer mit definierter Formulierung an Ammonium und Kalium.

Eine Alternative stellen ready-to-use PCR-Kits dar. Diese Kits sind meist als Komplettlösung konzipiert. Von der DNA-Extraktion bis hin zur Auswertung des amplifizierten DNA-Sequenz. Diese Kits sind zusätzlich auf bestimmte Anwendungen, DNA-Sequenzen und/oder auf die verwendete PCR-Technik spezialisiert.



Der theoretische Ablauf der klassischen PCR nach Mullis erreicht 20 – 50 Zyklen. Ein Zyklus enthält Eine Anfangs- und Endsequenz, sowie 2 Prozessschritte: Denaturierung, Primerhybridisierung und der Elongation.

Anfänglichen wird eine längere und sanftere Erhitzungsphase empfohlen, um eine ausreichende Aktivität der DNA-Polymerase zu ermöglichen. Nach dem erstmaligen Erhitzen wird das Melting (Schmelzen) der doppelsträngigen DNA eingeleitet. Bei Temperatur zwischen 90 und 96 °C lösen sich die Wassersstoffbrückenbindungen zwischen den komplementären Basen. Anschließend wird die Temperatur schnell auf 65 °C abgekühlt um eine Rückbildung zur Doppelhelix zu unterbinden. Durch Primer annealing (Primerhybridisierung) werden die Primer an die einzelsträngige DNA angelagert. Dieser Prozessschritt wird regulär 30 Sekunden bei Temperaturen von 55 – 65 °C gehalten. Im letzten Schritt dockt die DNA-Polymerase an den Einzelstrang an und komplementiert diesen von 5‘ nach 3‘ des Primers (Matrize 3‘→5‘; zu komplementierender Gegenstrang: 5‘→3‘). Diese Elongation, auch Polymerisation oder Amplifikation genannt, erfolgt beim Temperaturoptimum der DNA-Polymerase zwischen 68 und 72 °C. Das Melting, die Primer annealing und Elongation stellt einen Zyklus dar, dieser wird bis zu 50 mal wiederholt und zum Ende der PCR auf eine Temperatur um die 5 °C heruntergekühlt.